1. 產(chǎn)品有哪幾種規(guī)格？可檢測(cè)多少個(gè)樣本？

    產(chǎn)品分為48T和96T兩種規(guī)格。ELISA試劑盒

    每次實(shí)驗(yàn)的標(biāo)準(zhǔn)曲線一般設(shè)7個(gè)不同濃度，加上空白孔，標(biāo)準(zhǔn)曲線一共需要8個(gè)孔。因此，一個(gè)48T試劑盒zui多可以測(cè)定40個(gè)樣本（不做重復(fù)且一次用完），一個(gè)96T試劑盒zui多可以測(cè)定88個(gè)樣本（不做重復(fù)且一次用完）?？梢愿鶕?jù)實(shí)際樣本數(shù)量和實(shí)驗(yàn)計(jì)劃選擇合適的產(chǎn)品規(guī)格。

2.48T和96T的試劑盒有哪些不同？

    48T和96T的試劑盒，每個(gè)孔的反應(yīng)體系都是*一樣的。不同的是試劑盒中各組分的規(guī)格，詳見說明書。

3. 產(chǎn)品的穩(wěn)定性如何？

    產(chǎn)品在前期已通過嚴(yán)格的穩(wěn)定測(cè)試，發(fā)貨前亦須通過檢測(cè)并提供質(zhì)檢報(bào)告，在市場(chǎng)上深受廣大客戶的贊許！

4.貴公司有沒有酶活性檢測(cè)的試劑盒？

    酶活力的測(cè)定實(shí)際上就是測(cè)定酶促反應(yīng)的速率。酶活力的大小即酶含量的多少，可以用每克酶制劑或每毫升酶制劑含有多少酶單位來表示，單位是U/g或U/ml。酶活力的測(cè)定方法：⑴測(cè)定完成一定量反應(yīng)所需的時(shí)間，⑵測(cè)定單位時(shí)間內(nèi)酶催化化學(xué)反應(yīng)量。主要通過產(chǎn)物的增加量或底物的減少量來測(cè)定。常用的方法有：⑴分光光度法，⑵熒光法，⑶同位素測(cè)定法，⑷電化學(xué)法。

    ELISA的方法一般是對(duì)可溶性抗原或抗體進(jìn)行定性和定量的檢測(cè)，所以酶活性是不能用ELISA來檢測(cè)的。

5.一次ELISA實(shí)驗(yàn)需要多長(zhǎng)時(shí)間？

    雙抗體夾心ELISA法一次實(shí)驗(yàn)需要4-4.5小時(shí)，競(jìng)爭(zhēng)ELISA法一次實(shí)驗(yàn)需要2-2.5小時(shí)。

6.血清樣本如何處理？

    全血標(biāo)本于室溫放置2小時(shí)或4℃過后于1000×g離心20分鐘。仔細(xì)收集上清。保存過程中如有沉淀形成，應(yīng)再次離心。ELISA試劑盒

7. 血漿樣本如何處理？

    應(yīng)根據(jù)標(biāo)本的要求選擇EDTA、檸檬酸鈉或肝素作為抗凝劑，混合10-20分鐘后，于1000×g離心15分鐘，仔細(xì)收集上清。保存過程中如有沉淀形成，應(yīng)再次離心。

8. 尿液樣本如何處理？

    用無菌管收集。離心20分鐘左右（2000-3000轉(zhuǎn)/分）。仔細(xì)收集上清。保存過程中如有沉淀形成，應(yīng)再次離心。胸腹水、腦脊液參照此實(shí)行。

9.細(xì)胞上清液樣本如何處理？

    檢測(cè)分泌性的成份時(shí)，用無菌管收集。離心20分鐘左右（1000×g）。仔細(xì)收集上清。檢測(cè)細(xì)胞內(nèi)的成份時(shí)，用PBS（PH7.2-7.4）稀釋細(xì)胞懸液，細(xì)胞濃度達(dá)到100萬/ml左右。通過反復(fù)凍融，以使細(xì)胞破壞并放出細(xì)胞內(nèi)成份。離心10分鐘左右（5000×g）。仔細(xì)收集上清。保存過程中如有沉淀形成，應(yīng)再次離心。

10.   組織樣本如何處理？

    用預(yù)冷的PBS (0.01M,pH=7.4)沖洗組織，以去除殘留血液（勻漿中裂解的紅細(xì)胞會(huì)影響測(cè)量結(jié)果），稱重后將組織剪碎。將剪碎的組織與對(duì)應(yīng)體積的PBS（一般按1:9的重量體積比，比如1g的組織樣本對(duì)應(yīng)9mL的PBS，具體體積可根據(jù)實(shí)驗(yàn)需要適當(dāng)調(diào)整，并做好記錄。推薦在PBS中加入蛋白酶抑制劑）加入玻璃勻漿器中，于冰上充分研磨。為了進(jìn)一步裂解組織細(xì)胞，可以對(duì)勻漿液進(jìn)行超聲破碎，或反復(fù)凍融。zui后將勻漿液于5000×g 離心5~10分鐘，取上清檢測(cè)。ELISA試劑盒